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Blutkulturen

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Medizinisches Fachpersonal

Professionelle Referenzartikel sind für Angehörige der Gesundheitsberufe bestimmt. Sie wurden von britischen Ärzten verfasst und basieren auf Forschungsergebnissen, britischen und europäischen Leitlinien. Vielleicht finden Sie den Artikel Meningokokken-Infektion nützlicher oder einen unserer anderen Gesundheitsartikel.

Bei jedem Patienten, der in einem Krankenhaus Fieber oder Anzeichen einer Sepsis entwickelt, sollten Blutkulturen angelegt werden. Da die Sepsis eine der häufigsten Todesursachen ist, muss eine Infektion der Blutbahn schnell erkannt werden, um eine angemessene Antibiotikatherapie durchzuführen. Möglicherweise sind mehrere Sätze von Blutkulturen erforderlich, und es sollten auch Kulturen von anderen Stellen in Betracht gezogen werden, z. B. von Urin, Haut und Rachen.

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Wie man Blutkulturen abnimmt

Vorsichtsmaßnahmen

  • Es sollten aseptische Techniken angewandt werden, damit die Bakterien von der Haut nicht in die Kulturflaschen gelangen.

  • Idealerweise sollte die Haut mit Seife gewaschen und mit sterilem Wasser abgespült werden. Danach sollte eine Lösung auf Jodbasis aufgetragen werden, die nach 30 Sekunden Trocknungszeit mit 70%igem Alkohol abgewaschen wird. In der Praxis kommt dies nur selten vor; es müssen jedoch alle Anstrengungen unternommen werden, um eine aseptische Technik anzuwenden - z. B. Betadine® und/oder Alkoholspray und Handschuhe.

  • Es hat sich gezeigt, dass alkoholische Chlorhexidinlösungen im Vergleich zu wässrigem Povidon-Iod die Zahl der falsch-positiven Blutkulturen verringern.1

  • Zu den häufigsten Kontaminanten gehören Staphylococcus epidermidis, Corynebacterium spp., Propionibacterium spp. und Bacillus spp. (jedoch nicht Bacillus anthracis).

Verfahren

  • Standard-Blutkulturflaschen bestehen aus zwei Flaschen, von denen eine aerobe und die andere anaerobe Nährmedien enthält.

  • In der Regel sollten mindestens 10-15 ml in die Blutkulturflaschen eingespritzt werden (dies hängt von der Art der verwendeten Flaschen ab).

  • Von Säuglingen und Kindern werden oft kleinere Mengen entnommen. Die Aufteilung von 1 ml Blut eines Neugeborenen auf zwei Flaschen, eine aerobe und eine anaerobe, verbessert nachweislich die Ausbeute der Kultur im Vergleich zu 1 ml in einer einzigen aeroben Flasche.2

  • Neuere Vakuumgeräte ermöglichen die direkte Venenpunktion mit Übertragung von Blut in Blutkulturen.

  • In einigen Krankenhäusern nehmen Phlebotomisten häufig Blutkulturen ab.

  • Die Kontaminationsergebnisse können niedriger sein, wenn sie von erfahreneren Klinikern als von Nachwuchskräften genommen werden.

  • Mehrere Kulturen von mehreren Standorten erhöhen den Ertrag:

    • Dies gilt insbesondere für die infektiöse Endokarditis.

    • Ein Beispiel ist die Blutentnahme aus einer antekubitalen Fossa, 30 Minuten später aus der gegenüberliegenden antekubitalen Fossa und die letzte Blutentnahme aus einer dritten Stelle 30 Minuten später.

  • Blutkulturen können auch aus Leitungen entnommen werden, z. B. aus zentralvenösen Druckleitungen oder arteriellen Leitungen.

  • Studien haben gezeigt, dass folgende Maßnahmen die Kontaminationsrate senken können:3

    • Befolgung eines Protokolls.

    • Probenahme durch periphere Venenpunktion und nicht über einen intravaskulären Katheter.

    • Verwendung von sterilen Handschuhen.

    • Reinigung der Oberteile von Blutkulturflaschen mit Antiseptika.

    • Beimpfen von Blutkulturflaschen vor anderen Blutröhrchen.

    • Entnahme von Proben durch ein Phlebotomie-Team.

    • Überwachung der Kontaminationsraten.

    • Individuelles Feedback und Umschulung für diejenigen, die kontaminiert sind.

  • Eine Studie hat gezeigt, dass die Entwicklung eines neuen Verfahrens für die Entnahme von Blutkulturen, bei dem strikt auf sterile Technik geachtet wird, mit standardisierter Verwendung von Chlorhexidin-Hautantisepsis, sterilen Nadeln, sterilen Handschuhen, sterilen Feldern und einer Verfahrens-Checkliste zu einer Verringerung der Kontamination von Blutkulturen unter 3 % führte.4

  • Eine universelle Dekolonisierung mit Chlorhexidinbädern führt nachweislich zu einer erheblichen Verringerung der Kontamination von Blutkulturen.5

  • Eine Studie hat gezeigt, dass die Verwendung eines neuen automatisierten PCR-Tests zum Nachweis von Streptococcus pneumoniae, des GenomEra™ S. pneumoniae, innerhalb von 55 Minuten zu Ergebnissen führen kann, was offensichtlich deutlich schneller ist als bei den routinemäßig verwendeten Identifizierungsmethoden.6

Probleme mit Blutkulturen

  • Die Kontamination von Blutkulturen ist ein häufiges und vermeidbares Problem, insbesondere in der Notaufnahme.7

  • Falsch positive Blutkulturen aufgrund einer Kontamination der Probe mit Hautbakterien sind ein häufiges Problem, das zu einem unnötigen Einsatz von Antibiotika, zusätzlichen Labortests und einer längeren Verweildauer im Krankenhaus führen kann, wodurch erhebliche zusätzliche Krankenhauskosten entstehen.8

  • Die Wahrheits- und Falsch-Positiv-Raten für Blutkulturen variieren, liegen aber in der Regel jeweils im Bereich von 5-10 %.

  • Der Einsatz von Phlebotomie-Teams hat sich als wirksam erwiesen, um die Kontaminationsrate von Blutkulturen zu verringern.9

  • Die Umstellung der Blutkulturentnahme auf ein sterileres Verfahren führt nachweislich zu einer erheblichen Verringerung der Kontamination von Blutkulturen.7

Arten von Kulturflaschen

  • Es gibt verschiedene Arten von Blutkultursystemen, sowohl manuelle als auch automatische.

  • Es sind auch andere Kulturflaschen erhältlich, deren Verwendung vom klinischen Szenario abhängt - z. B. Kulturflaschen für Tuberkulose oder Pilze.

  • Es werden neue Technologien eingeführt, die eine schnelle Identifizierung von Krankheitserregern in positiven Blutkulturen ermöglichen.1011

  • Mehrere molekulare Plattformen können Bakterien, die mit Blutstrominfektionen in Verbindung stehen, viel schneller identifizieren als Standardmethoden.12

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Verarbeitung von Blutkulturen

  • Sobald Blutkulturen entnommen wurden, sollten sie beschriftet und unverzüglich an das Labor geschickt werden.

  • Im Labor werden die Flaschen geschüttelt und bei Körpertemperatur bebrütet. Wenn es außerhalb der Öffnungszeiten ist, werden die Kulturen in der Regel über Nacht bebrütet.

  • Basiskulturen werden 14 Tage lang bebrütet und Blindkulturen nach 3, 7 und 14 Tagen oder bei Anzeichen von Wachstum (z. B. Trübung, Hämolyse, Kolonien auf dem Agarhang in Castanedas Flaschen) angelegt.

  • Andere Flaschen können 7 Tage oder bis zu 3 Wochen lang bebrütet werden, wenn der Verdacht auf subakute bakterielle Endokarditis (SBE)/fastidiöse Organismen besteht.

  • Die Beobachtung der Flaschen auf ein positives Ergebnis wird bei manuellen Systemen mindestens zweimal täglich durchgeführt.

  • Automatische Systeme sind verfügbar und werden zunehmend eingesetzt. Ein Beispiel ist das BacT/ALERT®-Blutkultur-System, bei dem ein positives WachstumCO2 freisetzt, das von einem Sensor erkannt wird, der das Laborpersonal alarmiert (die Flaschen befinden sich in einem speziellen Schrank und sind durch einen Barcode mit dem Patienten verbunden).

  • Die neuen Flaschen BacT/ALERT® FAPlus und FNPlus BC mit antibiotikabindenden Polymerperlen verbessern nachweislich die Diagnose von Bakteriämien.13

  • Wenn Wachstum festgestellt wird, werden die Flaschen subkultiviert und eine Gram-Färbung durchgeführt. Daraus werden die entsprechenden Empfindlichkeiten abgeleitet. In einigen Fällen kann der Organismus innerhalb von Stunden nach Feststellung eines positiven Ergebnisses durch Gram-Färbung und weitere Tests identifiziert werden.

  • Weitere Tests, die direkt an der Blutkultur durchgeführt werden können, um die Identifizierung zu beschleunigen, sind Streptokokken-Gruppierungen, Koagulase-Tests, Antigentests für Pneumokokken und Meningokokken usw.

  • Der Mikrobiologe prüft dann die Ergebnisse und informiert das an der Behandlung des Patienten beteiligte Personal. Die Patienten werden also mit einer vorläufigen Therapie beginnen, die bestätigt wird, sobald die Empfindlichkeiten bekannt sind.

  • In der Regel handelt es sich bei einem Wachstum nur um einen einzigen Organismus; in sehr seltenen Fällen kann es sich jedoch um mehrere Organismen handeln, für die das Labor dann Empfindlichkeiten und weitere Tests durchführt.

Weiterführende Literatur und Referenzen

  • Oxoid signal® Blutkultur-System
  • BD Worldwide Diagnostic Systems
  1. Caldeira D, David C, Sampaio CHautantiseptika bei der Desinfektion venöser Einstichstellen zur Vorbeugung einer Kontamination durch Blutkulturen: systematische Überprüfung mit Meta-Analyse. J Hosp Infect. 2011 Mar;77(3):223-32. doi: 10.1016/j.jhin.2010.10.015. Epub 2010 Dec 30.
  2. Yaacobi N, Bar-Meir M, Shchors I, et alEine prospektive kontrollierte Studie über das optimale Volumen für neonatale Blutkulturen. Pediatr Infect Dis J. 2015 Apr;34(4):351-4. doi: 10.1097/INF.0000000000000594.
  3. Dawson SKontaminanten in Blutkulturen. J Hosp Infect. 2014 May;87(1):1-10. doi: 10.1016/j.jhin.2014.02.009. Epub 2014 Mar 26.
  4. Self WH, Speroff T, Grijalva CG, et alVerringerung der Kontamination von Blutkulturen in der Notaufnahme: eine Studie zur Qualitätsverbesserung mit unterbrochenen Zeitreihen. Acad Emerg Med. 2013 Jan;20(1):89-97. doi: 10.1111/acem.12057.
  5. Septimus EJ, Hayden MK, Kleinman K, et alVerringert das Baden in Chlorhexidin auf der Intensivstation für Erwachsene die Kontamination von Blutkulturen? Eine pragmatische, cluster-randomisierte Studie. Infect Control Hosp Epidemiol. 2014 Oct;35 Suppl 3:S17-22. doi: 10.1086/677822.
  6. Hirvonen JJ, Seiskari T, Harju I, et alVerwendung eines automatisierten PCR-Tests, des GenomEra S. pneumoniae, zum schnellen Nachweis von Streptococcus pneumoniae in Blutkulturen. Infect Dis (Lond). 2015 Nov;47(11):800-804. Epub 2015 Jul 10.
  7. Self WH, Mickanin J, Grijalva CG, et alVerringerung der Kontamination von Blutkulturen in Notaufnahmen von Gemeinschaftskrankenhäusern: eine multizentrische Bewertung einer Maßnahme zur Qualitätsverbesserung. Acad Emerg Med. 2014 Mar;21(3):274-82. doi: 10.1111/acem.12337.
  8. Alahmadi YM, McElnay JC, Kearney MP, et alBewältigung des Problems der Kontamination von Blutkulturen auf der Intensivstation durch eine pädagogische Maßnahme. Epidemiol Infect. 2015 Jul;143(9):1964-71. doi: 10.1017/S0950268814003008. Epub 2014 Nov 12.
  9. Snyder SR, Favoretto AM, Baetz RA, et alWirksamkeit von Praktiken zur Verringerung der Kontamination von Blutkulturen: eine systematische Überprüfung und Meta-Analyse der besten Praktiken in der Labormedizin. Clin Biochem. 2012 Sep;45(13-14):999-1011. doi: 10.1016/j.clinbiochem.2012.06.007. Epub 2012 Jun 16.
  10. Morgenthaler NG, Kostrzewa MSchnelle Identifizierung von Krankheitserregern in positiven Blutkulturen von Patienten mit Sepsis: Überprüfung und Meta-Analyse der Leistung des Sepsityper-Kits. Int J Microbiol. 2015;2015:827416. doi: 10.1155/2015/827416. Epub 2015 Apr 27.
  11. Ljungstrom L, Enroth H, Claesson BE, et alKlinische Bewertung kommerzieller Nukleinsäure-Amplifikationstests bei Patienten mit Verdacht auf Sepsis. BMC Infect Dis. 2015 Apr 28;15:199. doi: 10.1186/s12879-015-0938-4.
  12. McCann CD, Moore MS, May LS, et alBewertung von Echtzeit-PCR und Pyrosequenzierung für das Screening von bebrüteten Blutkulturflaschen von Erwachsenen mit Verdacht auf eine Infektion der Blutbahn. Diagn Microbiol Infect Dis. 2015 Mar;81(3):158-62. doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2014.11.014. Epub 2014 Dec 3.
  13. Amarsy-Guerle R, Mougari F, Jacquier H, et alHohe medizinische Auswirkungen der Einführung der neuen Blutkulturflaschen BacT/ALERT(R) FAPlus und FNPlus auf Polymerbead-Basis in die Standardversorgung. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2015 May;34(5):1031-7. doi: 10.1007/s10096-015-2319-8. Epub 2015 Feb 4.

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